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超低分子量蛋白Marker V(3.5-42 kD)(非预染)

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    超低分子量蛋白Marker V(3.5-42 kD)(非预染)

     

    Ultra Low Molecular Weight Protein Marker V(3.5-42 kD)

    Ver. 750271-2.0

     

    RTD6113    20次(100 μl)

    ● 贮存、运输及效期:

      -20℃保存;湿冰运输;有效期1年。

    ● 贮存缓冲液成分:

    65 mM Tris-HCl (pH 7.0), 20% Glycerol, 还原剂, 2% SDS, 0.005% 溴酚蓝。

    ● 产品简介:

       本产品包含8种低分子量蛋白质,分子量范围为3.5-42 kD,通过 Tris-Tricine-SDS-PAGE电泳并经考马斯亮蓝染色后可见分子量大小为3.5,4.5,8.5,14.4,17,21,30,42 kD的条带。

    以每次上样5 μl计算,该产品可以使用20次。

    技术规格

    条带数量

    8条

    浓度

    0.1-0.3 μg/μl

    上样前处理

    95-100℃加热处理5 min

    推荐凝胶体系

    16.5%或18%Tris-Tricine-SDS-PAGE

    推荐上样体积

    3-5 μl(1mm厚度10齿梳子)

    推荐染色方法

    非预染Marker,电泳时不可见条带,电泳后需要考马斯亮蓝染色可以观察条带

    不适用于非变性电泳

    为变性Marker,不适用于非变性电泳

     

    ● 使用说明:

    1. 第一次收到该产品,常温融化后,彻底混匀,离心快甩10 Sec将溶液完全收集到管底,-20℃贮存;

    2. 使用该产品时,常温解冻后轻轻混匀或用移液枪缓慢吹打均匀;

    3. 从原液中吸取所需的上样量至新的微量离心管中;

    4. 95-100°C下加热 5 min,使蛋白质完全变性;

    5. 低速离心快甩10 Sec后,取 3-5 μl上样电泳;

    一. 制胶:

    多肽电泳建议使用Tris-Tricine-SDS-PAGE系统来分离蛋白,该系统可以分离1-100 kD的蛋白质(最优分离2.5-30 kD)。客户可以使用Tris-Tricine-SDS-PAGE凝胶快速制备及电泳试剂盒

    (含预染Marker)(货号:RTD6121)或Tris-Tricine-PAGE凝胶制备及电泳试剂盒(多肽变性电泳)(货号:RTD6122)进行Tricine电泳,方便快捷。或者根据以下程序制备凝胶,先配制分离胶,聚合后再配制夹层胶,最后配制浓缩胶,3种胶的制胶体积比约为4.5:1.5:1.5。

    1.1 配制分离胶:

    1.1.1 按照表一将不同体积的分离胶组份加入到小烧杯中混合。

    表一  (一块1 mm 厚度小板胶用量)

     

     

     

    分离胶

    夹层胶

    浓缩胶

     

     

    16.5%T6%C/4.5 ml

    10%T3%C/2 ml

    5%T3%C/2 ml

    49.5%T 3%C

    /

    0.4 ml

    0.2 ml

    49.5%T 6%C

    1.5 ml

    /

    /

    4×凝胶缓冲液

    1.125 ml

    0.5 ml

    0.5 ml

    50%甘油(v/v)

    0.9 ml

    -

    -

    蒸馏水

    0.95 ml

    1.1 ml

    1.3 ml

    10%APS

    ~45 μl

    ~20 μl

    ~20 μl

    TEMED

    ~4.5 μl

    ~2 μl

    ~2 μl

     

    注:如非必须,不要使用1.5mm厚度的凝胶,这样会减少电泳后染色和脱色的时间。

    1.1.2 加入10%APS和TEMED,立即混匀以使溶液混匀。

    1.1.3 在玻璃板中灌入分离胶溶液,然后轻轻覆盖一层1-3 cm的无水乙醇,使凝胶表面保持平整。

    1.1.4 静置10-20分钟,待分离胶和乙醇层之间出现一个清晰的界面表示凝胶已聚合。

    注:凝胶的聚合时间与环境温度有关。夏天温度较高时,聚合较快;冬天气温低时,聚合时间会延长。分离胶37℃约10分钟,25℃约15分钟,18℃ 约20分钟可以聚合。

    1.2 配制夹层胶:

    1.2.1 去除覆盖在分离胶上的醇,用滤纸将残留的醇吸去。

    1.2.2 按照表一将不同体积的夹层胶组份加入到小烧杯中混合。

    1.2.3 加入10%APS和TEMED,立即混匀使溶液混匀。

    1.2.4 在玻璃板中灌入适量夹层胶溶液,使液面和短玻璃板上沿之间的距离比梳齿长0.5 cm即可,然后在溶液上轻轻覆盖一层1-3cm的无水乙醇,使凝胶表面保持平整。注:此溶液为过量,请勿全部注入。

    1.2.5 静置20-30分钟,待夹层胶和乙醇层之间出现一个清晰的界面表示凝胶已聚合。

    注:凝胶的聚合时间与环境温度有关。夏天温度较高时,聚合较快;冬天气温低时,聚合时间会延长。夹层胶37℃ 20分钟,25℃ 25分钟,18℃ 约30分钟可以聚合。

    1.3 配制浓缩胶

    1.3.1 去除覆盖在夹层胶上的乙醇,用滤纸将残留的醇吸去。

    1.3.2 按照表一将不同体积的浓缩胶组份加入到小烧杯中混合。

    1.3.3 加入10%APS和TEMED,立即混匀,以使溶液充分混匀。

    1.3.4 将梳子插入凝胶内,避免产生气泡。

    1.3.5 静置20-40分钟装待凝胶聚合。注:凝胶的聚合时间与环境温度有关。夏天温度较高时,聚合较快;冬天气温低时,聚合时间会延长。浓缩胶37℃ 20分钟,25℃ 30分钟,18℃ 40分钟可以聚合。

    二. 电泳:

    2.1 电泳缓冲液配制:

      电泳前,将10×阳极缓冲液(Cat No:AB080)和10×阴极缓冲液(Cat No:CB010)用蒸馏水稀释成1×缓冲液备用。

    2.2 样品处理:

      待上样的检测样品与2×Tricine上样缓冲液(Cat:TP050)等体积混合,95℃处理5分钟后上样。蛋白Marker一般已经含有上样缓冲液,预染Marker不能加热处理,混匀后直接上样,非预染Marker一般需要95℃处理5 min后上样。

    2.3 电泳:

      将电泳槽的外槽加入1×阳极缓冲液,内槽加入1×阴极缓冲液,轻柔拔出梳子,将Marker或蛋白样品加入点样孔,稳压电泳(电泳条件参考下表)

     

    电压

    电流变化

    电泳时间

    浓缩胶

    恒压30 V

    起始电流:~ 15 mA

    终止电流:~ 10 mA

    ~40 min

     

     

    注:等待样品指示前沿到达夹层胶上沿时,调高电压

     

    夹层胶

    恒压80 V

    起始电流:~ 35 mA

    终止电流:~ 30 mA

    ~60 min

     

     

    注:等待样品指示前沿到达分离胶上沿时,调高电压

     

    分离胶

    恒压120 V

    起始电流:~ 40 mA

    终止电流:~ 20 mA

    ~100 min

    待指示前沿到达分离胶下沿时,即可停止电泳,电泳时间总计约200 min。

    注:恒压条件下,电流不可调节,电流是逐渐降低的,观察记录电流数值。

     

    三. 凝胶检测:

    3.1 凝胶染色(FastBlue蛋白染色液):

    3.1.1将电泳后的PAGE胶取下放入塑料容器中,用适量蒸馏水漂洗,去除胶表面的SDS,残余SDS会导致染色液出现沉淀。

    3.1.2 弃水,加入适量染色液(以刚刚覆盖过胶面为适),摇床上常温摇动,根据下表确定染色时间。

    待检测蛋白量

    染色时间

    >1 μg

    ~5分钟

    100 ng-1 μg

    ~10分钟

    10 ng-100 ng

    ~60分钟

     

    3. 1.3 摇床上摇动至所有条带清晰可见。

    3. 1.4 蒸馏水摇动漂洗脱色1-2次,每次5-10分钟,至凝胶背景干净。

    3. 1.5 收集用过的染色液,可以重复使用2-3次。

    凝胶也可以使用常规考马斯亮蓝染色液(配方7)和脱色液(配方8)进行染色和观察。需要注意的是,常规染色和脱色方法需要较长时间,小肽由于长度较短,和凝胶结合不紧密,长时间在溶液中浸泡容易从凝胶中脱离。FastBlue蛋白染色液(货号:RTD6202)除具有染色快,无毒,灵敏性高等特点外,还能对小肽在染色中起到固定作用,不至于小肽在染色和脱色中从凝胶中脱离,是常规染色液的理想替代品。

    3.2 转膜:

    多肽电泳后转膜选择孔径0.22 μm PVDF膜(用前用甲醇处理润湿)或0.22 μm NC膜。

    3.2.1 半干转:使用伯乐Trans-Blot Turbo半干转机器请选择配套的5×RealBlot快速半干转转膜缓冲液(货号:RT5030),推荐转膜条件:一板小型凝胶(8×10 cm)恒流,1.3 A,10-15 min。

    3.2.1 湿转:湿转转膜缓冲液(25 mM Tris,192 mM Glycine, 0.01%SDS,20% Methanol,pH~8.3),可以选择10×Tris-甘氨酸转膜缓冲液(货号:TB1040)。推荐转膜条件:恒流200 mA  40-60 min。

    四.小分子蛋白质SDS-PAGE电泳试剂配制:

    1. 49.5%T3%C PAA(Cat:PS080)    

       丙稀酰胺         48 g    

       甲叉双丙稀酰胺  1.5 g

    用蒸馏水溶解后定容至100 ml,

    过滤后使用。

    贮存:4℃

    2. 49.5%T6%C PAA(Cat:PI080)    

       丙稀酰胺         46.5 g    

       甲叉双丙稀酰胺      3 g

     用蒸馏水溶解后定容至100 ml,

    过滤后使用。

    贮存:4℃

    3. 4×凝胶缓冲液(Cat:GB010)

    [4 M Tris; 0.4% SDS; pH8.45]

    Tris碱  48.4 g

    蒸馏水   80 ml

    0.4 g SDS或4 ml 10% SDS

    用HCl调pH值至8.45 25℃.

    用蒸馏水定容至100 ml,过滤后使用;贮存:4℃

    4. 10×阳极缓冲液(Cat:AB080)

    [2 M Tris pH8.9]

    Tris碱    121.1 g

    蒸馏水      400 ml

    用HCl调pH值至8.9

    用蒸馏水定容至500 ml

    贮存:常温

    注:使用前稀释成1×阳极缓冲液使用。

    5. 10×阴极缓冲液(Cat:CB010)

    [1M Tris;1M Tricine;1% SDS;pH ~8.3]

    Tris碱  121.14 g

    Tricine  179.2 g

    SDS 10 g

    用水溶解,定容至1000 ml(不要调pH)。

    贮存:4℃或常温

    注:使用前稀释成1×阴极缓冲液使用

    6. 2×Tricine多肽上样缓冲液(变性,还原)

    (Cat:TP050)

    2 ml  1M Tris-HCl pH6.8

    5 g 甘油

    0.2 g  SDS

    0.2 g DTT(或者400 μl β-巯基乙醇)

    4 mg 考马斯亮蓝G-250

    用灭菌水定容至10 ml,混匀分装

    贮存:-20℃

    7. 染色液(Cat:RTD6203)

    冰醋酸              10%(v/v)

    甲醇                50%(v/v)

    考马斯亮蓝G-250   0.2%(g/v)

    贮存:常温

    8. 脱色液(Cat:RTD6204)

    冰醋酸  10%(v/v)

    贮存:常温

    9. 50%甘油

    甘油               50 ml(63克)

    超纯水            定容到100 ml

    贮存:4℃

     

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