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Tris-Tricine-SDS-PAGE凝胶快速制备及电泳试剂盒(含预染Marker)

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  • 商品資訊

    Tris-Tricine-SDS-PAGE凝胶快速制备及电泳试剂盒(含预染Marker)

    Ver.750270-2.0

     

    货号

    名称

    规格

    RTD6121

    Tris-Tricine-SDS-PAGE凝胶快速制备及电泳试剂盒(含预染Marker)

    10次

     

     

    ● 产品组成:

    序号

    组分货号

    名称

    规格

    贮存

    1

    RTD6121-01

    2×浓缩胶聚合溶液

    10 ml

    4℃

    2

    RTD6121-02

    2×分离胶聚合溶液

    30 ml

    4℃

    3

    RTD6121-03

    2×凝胶缓冲液

    40 ml

    4℃

    4

    RTD6148

    双色预染超低分子量蛋白质Marker (1.5-42 kD)

    10次

    -20℃

    5

    TP080-01

    2×Tricine多肽上样缓冲液(变性,还原,含溴酚蓝)

    1 ml

    -20℃

    6

    AP020P

           10% APS(干粉)

    5 ml

    RT,配制后-20℃

    7

    TA0761-01

    TEMED

    0.5 ml

    4℃,避光保存

    8

    CB010P

    10×Tris-Tricine-SDS缓冲液(变性电泳,粉末型)

    500 ml

    RT,配制后4℃

    9

    RTD6202-02

    FastBlue蛋白染色液

    500 ml

    RT

     

    ● 产品简介:

    该产品含有多肽电泳全套试剂,可以用来检测1-20 kD的多肽大小。本试剂盒可配制至少10块常规大小(8×10cm),厚度1 mm的PAGE胶。该产品具有以下特点:

    1. 分辨率高:凝胶缓冲液独特配方,可以有效分离1-5 kD多肽;

    2. 使用方便:制胶无需计算所需溶液量;无需制备三层凝胶(浓缩胶,夹层胶,分离胶);

    3. 配套 Tris-Tricine-SDS缓冲液,无需区分阳极缓冲液和阴极缓冲液;

    4. 试剂盒配套有预染蛋白Marker,方便检测多肽大小;

    5. 试剂盒配套有快速蛋白染色液,最快可以在30分钟内完成染色过程,有效避免小肽从凝胶中游离。

    ● 贮存、运输及效期:

    按照标签温度贮存;湿冰运输;有效期一年。

    ● 使用说明:

    一. 制胶:

    10%APS溶液配制:

    10% APS为固体粉末,使用前加入5 ml双蒸水溶解即配制成10% APS溶液,将溶液分装后置于-20℃保存,通常一年内有效。该溶液在4℃条件下可以稳定保存两周。若发现凝胶聚合时间延长,应考虑更换使用-20℃保存的10% APS溶液。

    1.1 配制分离胶:

    1.1.1按照表一将不同体积的成分加入到小烧杯中混合;立即混匀5-10秒,以使溶液充分混匀。                   

    表1 (一块厚度1 mm 8×10cm凝胶胶用量)*

     

    分离胶

    浓缩胶

     

    18%T5C /5 ml

    4%T 2.6C/1.5 ml

    2×凝胶缓冲液

    2.5 ml

    0.75 ml

    2×浓缩胶聚合溶液

    /

    0.75 ml

    2×分离胶聚合溶液

    2.5 ml

    /

    10%APS

    ~50 μl

    ~15 μl

    TEMED

    ~5 μl

    ~1.5 μl

     

    注: * 如非必须,不要使用厚度1.5 mm的凝胶,尽量使用厚度1 mm的凝胶,这样会减少电泳后染色和脱色的时间。

    1.1.2 在玻璃板中迅速灌入适量分离胶溶液,使液面和短玻璃板上沿之间的距离比梳齿长0.5 cm即可。注:此溶液为过量,请勿全部注入。

    1.1.3 然后在分离胶溶液上轻轻覆盖一层1-2 cm的无水乙醇层,使凝胶表面保持平整。

    1.1.4 静置10-30分钟,待分离胶和乙醇层之间出现一个清晰的界面表示凝胶已聚合。

    注:凝胶的聚合时间与环境温度有关。夏天温度较高时,聚合较快;冬天气温低时,聚合时间会延长。可以根据表1的标准条件调节促凝剂的加入量。分离胶在25℃条件下,约20分钟可以聚合。

    1.2 配制浓缩胶:

    去除覆盖在分离胶上的乙醇层,用滤纸将残留的乙醇吸去。

    1.2.1 按照表一将不同成分加入到小烧杯中混合;立即混匀5-10秒,以使溶液充分混匀。

    1.2.2 将梳子插入凝胶内,避免产生气泡。

    1.2.3 静置30-50分钟待凝胶聚合。

    注:凝胶的聚合时间与环境温度有关。夏天温度较高时,聚合较快;冬天气温低时,聚合时间会延长。可以根据表1的标准条件调节促凝剂的加入量。浓缩胶在25℃条件下,约40分钟可以聚合。

    二. 电泳:

    2.1 变性电泳缓冲液和样品配制:

    2.1.1 10×Tris-Tricine- SDS缓冲液配制:

    将10×Tris-Tricine-SDS缓冲液(10×TTS)粉末(Cat:CB010P)置于一干净的烧杯中,加入500 ml超纯水,彻底搅拌混匀,不要调节pH,即配成500 ml 10×缓冲液。超纯水稀释10倍配成1×Tris-Tricine-SDS缓冲液。

    2.1.2 变性样品处理:

            待上样的检测样品与2×Tricine上样缓冲液(变性,还原,含溴酚蓝)[Cat No:TP080]等体积混合,95℃处理5分钟后上样。蛋白Marker一般已经含有上样缓冲液,根据说明书上样(预染Marker不能加热处理,非预染Marker上样前一般要95℃处理5分钟)。试剂盒配套的预染Marker(Cat:RTD6148)不要加热处理,溶化混匀后直接上样,1 mm厚度10齿梳子建议上样3-5 μl。

    2.2 电泳:

    将电泳槽的内槽加满电泳缓冲液,轻柔拔出梳子,用1 ml移液器将梳孔吹洗干净,将Marker或蛋白样品加入点样孔,稳压电泳(表2),至溴酚蓝指示前沿至分离胶下沿位置时即可停止电泳。整个电泳过程大约需要2.5-3个小时。

    表2 多肽电泳条件(单板电泳)

     

    电压

    电流变化

    电泳时间

    浓缩胶

    恒压80 V

    起始电流:30-35 mA

    终止电流:25-30 mA

    ~20 min

     

     

    注:等待样品指示前沿到达分离胶上沿时,调高电压

     

    分离胶

    恒压120 V

    起始电流:40-45 mA

    终止电流:15-20 mA

    ~200 min

     

     

    注:恒压条件下,电流不可调节,电流是逐渐降低的,观察记录电流数值。

     

     

    三. 染色:

    3.1将电泳后的PAGE胶取下放入塑料容器中,用适量蒸馏水漂洗,去除胶表面的SDS,残余SDS会导致染色液出现沉淀。

    3.2 弃蒸馏水,加入适量染色液(以刚刚覆盖过胶面为适),摇床上常温摇动,根据下表确定染色时间。

    待检测蛋白量

    染色时间

    >1 μg

    ~5分钟

    100 ng-1 μg

    ~10分钟

    10 ng-100 ng

    ~60分钟

     

    3. 3 摇床上摇动至所有条带清晰可见。

    3. 4 蒸馏水摇动漂洗脱色1-2次,每次5-10分钟,至凝胶背景干净。

    3. 5 收集用过的染色液,可以重复使用2-3次。

    凝胶也可以使用常规考马斯亮蓝染色液和脱色液进行染色和观察。需要注意的是,常规染色和脱色方法需要较长时间,小肽由于长度较短,和凝胶结合不紧密,长时间在溶液中浸泡容易从凝胶中脱离。FastBlue蛋白染色液除具有染色快,无毒,灵敏性高等特点外,还能对小肽在染色中起到固定作用,不至于小肽在染色和脱色中从凝胶中脱离,是常规染色液的理想替代品。

    四. 转膜:

    多肽转膜选择孔径0.22 μm PVDF膜(用前用甲醇处理润湿)或0.22 μm NC膜。

    4.1 半干转:

    使用伯乐Trans-Blot Turbo半干转机器请选择配套的5×RealBlot快速半干转转膜缓冲液(货号:RT5030)。转膜推荐条件:一板小型凝胶(8×10 cm)恒流,1.3 A,7-10 min。

    4.2 湿转:

    湿转转膜缓冲液(25 mM Tris,192 mM Glycine, 0.01%SDS,20% Methanol,pH~8.3),可以选择10×Tris-甘氨酸转膜缓冲液(湿转,溶液型)(货号:TB1040)。转膜条件:恒流200 mA  40-60 min。

     

    五. 实验示例:

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